Épreuves de sensibilité du complexe Mycobacterium tuberculosis (CMTB) avec antituberculeux mineurs
<<Retourner au laboratoireAccrédité par le Conseil canadien des normes au laboratoire numéro 594 (ISO/IEC 17025)
Formulaires de demande
Détails de la référence
Déterminer la sensibilité de l'isolat clinique aux antituberculeux mineurs, à des concentrations critiques, (capréomycine, éthionamide, kanamycine, ofloxacine, PAS, rifabutine, amikacine, moxifloxacine, linézolide et streptomycine) à l'aide de la méthode de détection BACTEC MGIT 960.
- Tuberculose (TB)
La croissance sur milieu solide ou sous forme liquide
- Pour la croissance sur milieu solide, les colonies isolées sur milieu en boîte de Pétri. La croissance du complexe Mycobacterium tuberculosis doit être visible et ne doit pas dépasser l’âge de 4 semaines.
- Pour les cultures sous forme liquide, un volume minimum de 4 mL de culture en croissance active
- Les cultures ayant une croissance inadéquate, qui faisant l’objet d’une contamination, ou qui comprenant plus d’une espèce de Mycobacterium ne seront pas traitées et une nouvelle culture sera demandée.
S/O
Expédier toutes les cultures à température ambiante (NE PAS congeler) pour livraison le lendemain, et avant le mercredi de chaque semaine pour s'assurer qu'elles soient livrées au plus tard le vendredi.
L’expédition des prélèvements doit être confiée à une personne détenant un certificat de formation TMD, conformément au Règlement sur le TMD. Pour plus d’information sur la catégorisation des matières à des fins d’expédition, veuillez consulter la partie 2 de l’appendice 3 du règlement ou la section 3.6.2 du règlement de l’IATA sur les produits dangereux.
La tuberculose est une maladie à déclaration obligatoire, et les épreuves servant à vérifier la sensibilité aux antibiotiques sont également obligatoires dans tous les cas au Canada.
Un avis d’envoi d’échantillon doit être transmis par courriel ou par télécopieur avant l’expédition des isolats. Les échantillons doivent être expédiés à l’attention de : Melissa Rabb, chef des Services de référence et de diagnostic, 204-789-6081/204-789-6038. La réquisition du CNRM doit être complétée, signée par le superviseur/ou la personne désignée du laboratoire expéditeur et inclure l’origine du spécimen, le sexe et la date de naissance du patient, l’histoire clinique et l’informations sur l’identifiant du laboratoire et la personne-ressource (requérant). Veuillez préciser les caractéristiques des isolat: la microscopie, la pigmentation, les caractéristiques des cultures, la vitesse et température de croissance, et l’identification.
La demande d’analyse doit être accompagnée des résultats des tests de sensibilité de première ligne du CMTB. Les cultures seront rejetées si les documents nécessaires sont incomplets ou manquants.
Les échantillons renfermant des mycobactéries du complexe Mycobacterium tuberculosis (CMTB) qui sont résistantes à la rifampicine ou à au moins deux des médicaments utilisés en première intention seront soumis à des tests visant à évaluer l’efficacité d’antituberculeux de deuxième intention (capréomycine, éthionamide, kanamycine, ofloxacine, acide para-amino-salicylique, ansamycine, amikacine, moxifloxacine, linézolide et streptomycine) à des concentrations critiques, au moyen de la méthode de détection BACTEC™ MGIT™ 960. La moxifloxacine, l’ofloxacine et l’isoniazide à la concentration la plus élevée seront mis à l’essai sur les échantillons renfermant des mycobactéries du CMTB qui sont résistantes à la concentration critique d’isoniazide. Les résultats seront interprétés conformément aux lignes directrices du CLSI (1).
Le délai de 45 jours civils est à partir du moment de la réception d’un échantillon. Il comprend la durée du traitement de l’échantillon et la période de croissance en culture.
- CLSI. Susceptibility Testing of Mycobacteria, Nocardia and Other Aerobic Actinomycetes. 3rd ed. CLSI standard M24. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2018.
- Inderlied CB and Pfyffer GE. (2003) Susceptibility Test Methods: Mycobacteria, p. 1149 – 77. In Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, and Yolken RH (ed). Manual of Clinical Microbiology, 8th ed. American Society for Microbiology, Washington, D.C.
- Sabine Rüsch-Gerdes, Gaby E. Pfyffer, Manuel Casal, Maureen Chadwick, and Salman Siddiqi. 2006. Multicenter Laboratory Validation of the BACTEC MGIT 960 Technique for Testing Susceptibilities of Mycobacterium tuberculosis to Classical Second-Line Drugs and Newer Antimicrobials. J. Clin. Microbiol. 44: 688-692.
- Gaby E. Pfyffer, Donald A. Bonato, Adeleh Ebrahimzadeh, Wendy Gross, Jacqueline Hotaling, John Kornblum, Adalbert Laszlo, Glenn Roberts, Max Salfinger, Franziska Wittwer, and Salman Siddiqi. 1999. Multicenter Laboratory Validation of Susceptibility Testing of Mycobacterium tuberculosis against Classical Second-Line and Newer Antimicrobial Drugs by Using the Radiometric BACTEC 460 Technique and the Proportion Method with Solid Media. J. Clin. Microbiol. 37: 3179-3186.
- Annika Krüüner, Malcolm D. Yates, and Francis A. Drobniewski. 2006 Evaluation of MGIT 960-Based Antimicrobial Testing and Determination of Critical Concentrations of First- and Second-Line Antimicrobial Drugs with Drug-Resistant Clinical Strains of Mycobacterium tuberculosis. J. Clin. Microbiol. 44: 811-818.
- M. K. Sharma, Thibert L., Chedore P., Shandro C., Jamieson F., Tyrrell G., Christianson S., Soualhine H., Wolfe J. (2011). A Canadian Multicentre Laboratory Study for Standardized Second-line Antimicrobial Susceptibility testing of Mycobacterium tuberculosis. J. Clin. Microbiol. 49(12): 4112-6.